当前位置:首页 >> 农林牧渔 >>

外源SA对持续低温胁迫藜豆幼苗的生长及生理特性的影响


外源SA对持续低温胁迫藜豆幼苗的生长及生理特性的 影响
学生:×××,江汉大学生命科学学院 指导老师:×××,江汉大学生命科学学院

摘要
[目的]探讨外源 SA 在低温胁迫下对藜豆幼苗抗冷性的影响以及确定提高幼苗抗 寒性适宜浓度。[方法]分别用 5℃和 10℃低温胁迫 2 叶一心的藜豆幼苗,观察植 株生长的变化以及在 10℃低温胁迫下,用

0、1、2、3、4mmol/L 的水杨酸喷藜 豆幼苗叶片,预处理 3 天,观察对株高、鲜重等生长指标和对蛋白质、丙二醛、 脯氨酸、膜透性等生理指标的影响。[结果](1)藜豆植株能忍受 10℃的低温, 而 5℃的低温会使植株死亡; (2)10℃低温下,4mmol/L 的 SA 抑制幼苗的生长, 而 1、2、3mmol/L 的 SA 对植株的株高和鲜重没有显著影响; (3)1-4mmol/L 的 SA 预处理能提高藜豆幼苗叶片中的蛋白质含量,2-4mmol/L 的 SA 能使游离脯 氨酸含量增加; (4)1-4mmol/L 的 SA 对反应膜稳定性的指标丙二醛含量和膜透 性影响不大。[结论](1)5℃的低温使藜豆致死; (2)2-3mmol/L 的外源 SA 可 通过提高体内的蛋白质和脯氨酸含量来增强藜豆幼苗的抗冷性。

关键词
藜豆;低温胁迫;外源SA;抗冷性

Effects of exogenous salicylic acid on the growth and physiological characteristics of velvetbean seedlings under continual low temperature stress
Student: Cui Yawei(college of life science, Jianghan university, wuhan 430056) Tutor: Zhang Fengyin(college of life science, Jianghan university, wuhan 430056)

Abstract
Objective To explore the effects of exogenous salicylic acid(SA)under low
temperature stress on cold tolerance of velvet seedlings and to determine the suitable treatment concentrations.

Materials and methods Respectively 5℃ and 10℃ low temperature stress as
one of two leaves to observe changes in plant growth.In this paper, under 10℃ low temperature stress on leaves applicated 0,1,2,3,4 mmol/L exogenous salicylic acid pretreated 3 days, and observe the morphological changes, measuring its plant height, fresh weight and protein content, MDA content, proline content, Relative electrolyte leakage and other physiological indicators, and through these data to discuss salicylic acid on cold resistance of seedling.

Results 1)The seedlings can endure 10℃, while 5℃ the seedlings will die; 2)
Under 10℃,4mmol/L of SA inhibited the growth of seedlings, and1,2,3mmol/L of SA pre-treated on height and weight had no significant effect; 3)1-4mmol/L of SA pretreated can improve the velvetbean seedlings protein content in leaves,2-4mmol/L of SA pretreated can increase free proline content; 4)1-4mmol/L of SA pretreated on MDA and Relative electrolyte leakage had no effect.

Conclusion 1) Low temperature of 5℃made the velvetbean seedlings death;
2)2-3mmol/L of exogenous SA can improve the body's protein and proline content in velvetbean to enhance the chilling resistance of the seedlings.

Key Words
Velvetbean; Exogenous salicylic acid; Low temperature stress; Chilling tolerance

目录
1 前言.............................................................. 1 2 材料与方法 ....................................................... 1 2.1 实验材料 .................................................... 1 2.2 实验方法 .................................................... 1 2.3 测量项目 .................................................... 2 2.3.1 生长指标测定 .......................................... 2 2.3.2 可溶性蛋白质含量测定 .................................. 2 2.3.3 游离脯氨酸(Proline,Pro)含量测定 ...................... 3 2.3.4 丙二醛(MDA)含量测定 ................................... 3 2.3.5 叶片质膜透性测定 ...................................... 4 3 结果与分析 ........................................................ 5 3.1 5℃和 10℃低温胁迫对幼苗形态的影响 .......................... 5 3.2 外源 SA 对藜豆幼苗生长的影响 ................................ 5 3.3 外源 SA 对藜豆幼苗生理指标的影响 ............................ 5 3.3.1 可溶性蛋白质质量分数的变化............................ 5 3.3.2 游离脯氨酸含量的变化.................................. 5 3.3.3 MDA 质量摩尔浓度量的变化 .............................. 6 3.3.4 细胞膜透性的变化...................................... 6 4 讨论 .............................................................. 6 4.1 外源 SA 促进藜豆幼苗生长的适宜浓度 .......................... 6 4.2 外源 SA 对藜豆幼苗抗冷性的影响 .............................. 7 参考文献............................................................ 8 致谢............................................................... 10

1 前言
藜豆(Stizo1obium capitatum Kuntze) ,别名狸豆、猫豆、虎豆、狗爪豆、 八升豆等,为豆科(Leguminosae)藜豆属(Stizologium P.Br.)一年生缠绕性 草本植物,以嫩荚及种子供食用的栽培种群。可作蔬菜食用的有黄毛藜豆 (Stizolobium hassjoo Piper et Tracy) 、茸毛藜豆(S.deeringianum Bort.) 、藜 豆(S.capitatumKuntze)及白毛藜豆(S.niveum Kuntze)等 4 个种。原产亚 洲南部,分布于热带地区(美洲除外),我国四川、云南、广西、广东、海南、 贵州等省均有栽培[1]。藜豆属于喜温耐热作物,2008 年-2010 年在湖北省进行春 播时发现,如果在种子萌发或幼苗生长期间遇到低温,或者种子不出苗,或者幼 苗死亡,这给藜豆的种植带来很大困难。 水杨酸(Salicylic acid,SA)是一种能调节植物生长发育过程的小分子酚类物 质,化学名称为邻羟基苯甲酸,是桂皮酸的衍生物[1]。1992 年,Raskin 提出 SA 可 被看作是一种新的植物内源激素[3],它对人体无害,参与了植物植物体内许多生 理生化过程,如植物开花、种子萌发、气孔关闭、膜的透性、离子吸收、植物的 抗病性等[4-5]。 对植物抗逆作用的研究证实, 加强了抗氰呼吸途径的电子传递, SA 电子传递系统产生的能量没有转变为化学能,多以热能形式释放[3]。李德红等[6] 认为 SA 可能与植物抵抗低温有关,现已证实 SA 能有效提高黄瓜、西瓜、玉米 和番茄等幼苗的抗冷性[7-11]。 因此,本实验拟观察在 5℃和 10℃低温胁迫下对藜豆幼苗生长影响以及在 10℃低温胁迫时用外源 SA 对藜豆幼苗生长及生理特性的影响,特别是对细胞膜 稳定性的影响。旨在探讨外源 SA 提高藜豆幼苗抗冷性的机理以及适宜的处理浓 度,为解决藜豆苗期低温冷害问题提供理论依据。

2 材料与方法
2.1 实验材料
用来自广西东兰县灰籽藜豆作为实验材料。

2.2 实验方法
用温汤浸种法浸藜豆种子 16 h,点播在盛有有机营养基质的育苗穴盆里,穴 盆放入温度白天控制在 30℃,晚上 15℃,相对湿度保持在 75%培养箱中培养。 待幼苗长到 2 叶 1 心时,分别用 5℃和 10℃的低温处理,观察植株的生长发育变 化。同时,用 0,1,2,3,4 mmol/L 的 SA 溶液进行雾化喷洒,使溶液在叶片 24h 将幼苗放人 LRH-300-GS 型人工气候箱中用 10℃ 上聚成水滴状但不滴落。 后,

1

低温进行胁迫处理。实验采用完全随机设计、重复 3 次,每个重复 30 株。人工 气候箱中相对湿度保持在 75%、光照时间为 12h,持续低温胁迫处理 3d 后观察 幼苗的形态,测定生理指标。

2.3 测量项目
2.3.1 生长指标测定 每重复随机取 10 株幼苗用水冲洗干净后,用滤纸吸干水后分别测量株高、 根重及植物鲜重。用烘干法测植株干重。 2.3.2 可溶性蛋白质含量测定 采用考马斯亮蓝 G-250 染色法[12]。其步骤如下: 1)标准曲线制作 取 6 支 10mL 干净的具塞试管按表 1 加入各试剂。盖塞

后将试管中的溶液倒转混合, 放置 2min 后用 752 型紫外可见分光光度计在 595nm 波长下比色,记录光密度值。以光密度值为纵坐标,标准蛋白含量为横坐标,绘 制标准曲线,求线性回归方程。
表 1 各试管中试剂加入量 管 号 1 0 1.0 5.0 0 2 0.2 0.8 5.0 20 3 0.4 0.6 5.0 40 4 0.6 0.4 5.0 60 5 0.8 0.2 5.0 80 6 1.0 0 5.0 100

100?g/mL 标准蛋白溶液(mL) 蒸馏水(mL) 考马斯亮蓝 G-250 试剂(mL) 蛋白质含量(?g)

2)样品中蛋白质的提取

称取 0.2g 藜豆叶片,加入 8mL 蒸馏水,转移到

离心管中, 3000r/min 离心 10min, 在 然后静置 30min, 弃去沉淀,上清液转入 50mL 容量瓶,并以蒸馏水定容至刻度,即得待测样品提取液. 3)样品中蛋白质含量的测定 另取 2 支 10mL 具塞试管,分别吸取样品蛋

白质提取液 1mL,放入具塞刻度试管中,各加入 5mL 考马斯亮蓝 G-250 蛋白试 剂,充分混合,放置 2min 后以蒸馏水为对照,用 752 型紫外可见分光光度计在 595nm 波长下测定光密度 OD595nm,并通过标准曲线查得待测样品提取液中蛋白 。 质的含量 X(?g) 4)公式计算: 查得的蛋白质含量(mg)*提取液总体积(mL) 错误! 错误! 样品鲜重(g)*测定时加样量(mL)

样品中蛋白质含量(mg/g)=

未指定书签。错误!未指定书签。 未指定书签。错误!未指定书签。

2

2.3.3 游离脯氨酸(Proline,Pro)含量测定 采用酸性水合茚三酮法[12]。其步骤如下: 1)标准曲线制作: (1)取 7 支具塞刻度试管按表 2 加入各试剂。混匀后加玻璃球塞,在沸水 中加热 30min。
表 2 各试管中试剂加入量 管 号 0 0 2.0 2.0 3.0 0 1 0.2 1.8 2.0 3.0 2 2 0.4 1.6 2.0 3.0 4 3 0.8 1.2 2.0 3.0 8 4 1.2 0.8 2.0 3.0 12 5 1.6 0.4 2.0 3.0 16 6 2.0 0 2.0 3.0 20

标准脯氨酸量(mL) H2O(mL) 冰乙酸(mL) 显色液(mL) 脯氨酸含量(?g)

(2)取出、冷却后向各管加入 5mL 甲苯充分振荡,以萃取红色物质。静置 待分层后吸取甲苯层以“0”管为对照在波长 520nm 下比色。 (3)以光密度值为纵坐标,脯氨酸含量为横坐标,绘制标准曲线,求线性 回归方程。 2) 样品测定: 取不同处理的剪碎混匀藜豆叶片 0.2-0.5g, 分别置于大试管中, 加入 5mL 3%磺基水杨酸溶液,管口加盖玻璃球塞,于沸水浴中浸提 10min。取 出试管,待冷却至室温后,吸取上清液 2mL,加 2mL 冰乙酸和 3mL 显色液,于 沸水浴中加热 30min。取出冷却后向各管加入 5mL 甲苯充分振荡,以萃取红色 物质。静置待分层后吸取甲苯层,以空白管为对照,用 752 型紫外可见分光光度 计在波长 520nm 下比色测定。 3)计算公式: 从标准曲线方程中计算出测定液中脯氨酸浓度, 按下式计算样品中脯氨酸含 量的百分数: 脯氨酸(?g/g FW 或 DW)=(C×V/a)/W C—提取液中脯氨酸含量 (?g) 由标准曲线求得; , V—提取液总体积 (mL) ; 其中: W—样品重(g) ;a—测定时所吸取提取液的体积(mL) 。 2.3.4 丙二醛(MDA)含量测定 采用硫代巴比妥酸比色法[12]。其步骤如下: MDA 的提取 1) 称取剪碎的试材 0.5g, 加入 2mL 10%TCA 和少量石英砂,

3

研磨至匀浆, 再加适量 TCA 进一步研磨, 匀浆转移到 5mL 离心管中, 4000rpm 在 离心 10min,上清液为样品提取液。 2)测定指标和原理:取滤液 2mL(空白加 2mL 蒸馏水) ,加 0.67%硫代巴 比妥酸 2mL,混匀物于沸水浴中反应 15min,迅速冷却后,进一步过滤,然后用 752 型紫外可见分光光度计测 450nm、532nm 和 600nm 的吸光度值。MDA 在高 温、酸性条件下,与硫代巴比妥酸(TBA)形成在 532nm 处有最大吸收的有色 三甲基复合物,该复合物的吸光系数为 155mmol/(L?cm),并且在 600nm 处有最 小光吸收。 3)计算公式: 植物组织中糖类物质对 MDA-TBA 反应有干扰作用,经实验得出消除糖干 扰后公式为: C(? mol/L)=6.45(A532-A600)-0.56A450 A450、A532、A600 分别代表 450nm、532nm、600nm 波长下的吸光度值,用 此公式可直接求得植物样品提取液中 MDA 的浓度, 再根据植物组织的重量计算 样品中 MDA 的含量: MDA(? mol/g FW) = 2.3.5 叶片质膜透性测定 用电导仪法[12]。其步骤如下: 1)选取藜豆叶片在一定部位上生长叶龄相似的叶子若干,剪下后,先用纱 布拭净,称重 0.5g。 2)用直径为 1cm 的打孔器钻取 12 片小圆片在 50mL 小烧杯中,并用玻棒或 干净尼龙网压住,在杯中准确加入蒸馏水 20 mL,浸没叶片。 3)放入真空干燥器,用抽气机抽 10min 以抽出细胞间隙中的空气,然后缓缓 放入空气,水即被压入组织中而使叶下沉。 4)将抽过气的小烧杯取出,静置 20min,然后用玻棒轻轻搅动叶片,在 20~ 25 ℃恒温下,用 DDS-307 电导率仪测定溶液电导率。 5)测过电导率之后,再放入 100℃沸水浴中 15min,以杀死植物组织,取出 用自来水冷却 10min,在 20~25℃恒温下测其煮沸电导率。同时测定蒸馏水(空 白)的电导率(注意:每测定完一个样液后,用蒸馏水漂洗电极,再用滤纸将电 极擦干,然后进行下一个样液的测定) ,按下公式计算处理电解质的相对外渗率: MDA浓度*提取液体积 植物组织鲜重

4

电解质的相对外渗率(%)=

处理电导率-本底电导率 ×100 煮沸电导率-本底电导率

3 结果与分析
3.1 5℃和 10℃低温胁迫对幼苗形态的影响
5℃低温胁迫 3d 后,藜豆幼苗叶片变褐,叶缘皱缩卷曲,干枯萎蔫,生长点 坏死,导致植株死亡;10℃胁迫下,藜豆的植株没有发现死亡现象,但在幼叶上 发现冷害现象,主要表现在对叶片其保护作用的角质层受到破坏。

3.2 外源 SA 对藜豆幼苗生长的影响
外源水杨酸对藜豆幼苗生长的影响随浓度的不同而不同。在 10℃低温胁迫 下,用浓度 1mmol/L,2mmol/L,3mmol/L 的 SA 喷洒的植株的单株的鲜重、干 重以及根的鲜重与对照相比差异不显著,而浓度在 4mmol/L 时则明显降低单株 的鲜重、 干重以及根的鲜重。 对株高的影响, 个处理之间则差异不显著 5 (表 3) 。
表 3 外源 SA 处理对低温胁迫下藜豆幼苗生长的影响 SA 浓度 植株鲜重 (g) 植株干重(g) (mmol/L) 0 1 2 3 4 5.878 a 5.287 ab 4.940 ab 5.078 ab 4.718 b 0.919a 0.730 ab 0.798 ab 0.879 ab 0.699 b 8.783a 9.067a 8.833a 8.683a 8.142a 1.293a 1.185ab 1.070ab 1.102ab 0.892b 株高(cm) 根重(g)

注:同列不同小写字母表示差异达到 0.05 显著水平。

3.3 外源 SA 对藜豆幼苗生理指标的影响
3.3.1 可溶性蛋白质质量分数的变化 可溶性蛋白质是植物抗寒中细胞的主要渗透调节物质之一,细胞内可溶性蛋 白质与植物抵御低温胁迫之间具有平衡增长关系。王克安等[13]研究发现,随着植 物组织内可溶性蛋白质含量的增加,植物的抗寒性也随之增加。实验结果表明经 过水杨酸处理后蛋白质的含量有了明显的提高, 提高的程度也受 SA 浓度的影响。 经过 2-4mmol/LSA 溶液处理后,它们之间蛋白质含量差异不显著,与对照相比 蛋白质含量升高明显,而 1mmol/LSA 溶液与对照之间差异不显著。说明外源水 杨酸能够提高可溶性蛋白质的积累,且与 SA 的处理浓度有关(表 4) 。 3.3.2 游离脯氨酸含量的变化 由于脯氨酸的积累是作为渗透调节物质和防脱水剂而起作用的, 可作为植物
5

受冷害的—个指标[14]。 从表 4 可看出, 分别用 1-4mmol/L 的 SA 溶液喷洒藜豆后, 遇低温胁迫时均能显著或极显著提高幼苗叶片中游离脯氨酸含量。 说明在低温条 件下水杨酸的施用会使脯氨酸大量积累,来抵御冷害的影响,从而缓解低温对藜 豆幼苗的不良影响。 3.3.3 MDA 质量摩尔浓度量的变化 植物在逆境条件下,往往会发生膜脂过氧化作用,MDA 是膜脂过氧化作用 的最终产物,也是反映细胞膜系统受伤害程度的重要指标[15]。本实验中分别用 藜豆幼苗叶片中丙二醛的含量与对照相 浓度为 1-4mmol/L 的 SA 溶液预处理后, 比没有明显的差异(表 4) 。说明施用 1-4mmol/L 的外源水杨酸对藜豆幼苗的叶 片膜脂伤害没有缓解作用, 这与所有处理叶片上均可见到附着蜡质层被破坏相一 致。 3.3.4 细胞膜透性的变化 相对电导率是检验植物受逆境胁迫后细胞膜受损伤程度的重要指标。 当植物 受逆境胁迫时,细胞膜遭破坏,膜透性增大,从而使细胞内电解质外渗,以致植 物细胞浸提液的电导率增大[16]。因此电导率的高低可以反映出细胞质膜透性的 大小。从表 4 可以看出,用 4 个浓度的 SA 处理的藜豆幼苗细胞膜的相对电导率 与对照组之间的差异不显著,这也说明用 SA 处理过的幼苗细胞膜稳定性没有显 著变化。
表 4 外源 SA 处理对藜豆幼苗的生理指标的影响 SA 浓度 (mmol/L) 0(CK) 1 2 3 4 可溶性蛋白质质量 分数(mg/g) 0.451 b 0.930 ab 1.144 a 1.092 a 0.968 a 游离脯氨酸含量 丙二醛 mol/g) (? (?g /g) 58.082 cB 102.197 bAB 125.088 abA 125.038 abA 146.358 aA 2.769 a 2.770 a 3.195 a 3.332 a 3.103 a (%) 8.637 a 11.167 a 12.050 a 11.080 a 10.880 a 相对电导率

注: 同列不同小写字母表示差异达到 0.05 显著水平, 大写字母表示差异达 0.01 极显著水平。

4 讨论
4.1 外源 SA 促进藜豆幼苗生长的适宜浓度
从本实验的外源 SA 对藜豆幼苗生长的影响方面发现不同的 SA 浓度间差异 不显著。未能寻找出促进藜豆幼苗生长的外源 SA 的适宜浓度。这可能与 SA 浓
6

度设置范围有关。如果进一步寻找适宜的促进生长的浓度,还需要扩大 SA 的浓 度范围。

4.2 外源 SA 对藜豆幼苗抗冷性的影响
低温冷害会引起蛋白质的变化,主要表现在可溶性蛋白的变化,酶类的变化 及产生抗冷蛋白。 一般情况下冷害会加快蛋白质的分解变性, 减慢其合成的速度, 使得蛋白质含量不断减少,植物体伤害程度加深[17]。张琳等[18]研究发现,在低 温胁迫下,喷施 SA 处理的植株体内可溶性蛋白质含量上升趋势明显大于未喷施 SA 处理的植株,并且处理的最佳浓度为 3.0 mmol/L。本实验中经过 SA 处理的 藜豆幼苗叶片中可溶性蛋白质含量明显高于未用 SA 处理的藜豆幼苗,说明 SA 能引起藜豆幼苗叶片中的可溶性蛋白的变化,使蛋白质含量增加,降低低温对幼 苗的伤害。 脯氨酸是一种亲水性氨酸,也是一种渗透调节物质,能缓解因低温脱水造成 的渗透胁迫[19]。Borman 等[20]认为,游离脯氨酸含量的增加可提高烟草抗冷性。 本实验中用 SA 预处理的藜豆幼苗叶片中游离脯氨酸的含量明显提高。因此可通 过使用外源 SA 后增加游离脯氨酸含量来提高藜豆的抗冷性。
LYON
[21]

研究表明:细胞膜相对透性、MDA 含量是植物膜系统是否稳定的重

要指标,而膜系统稳定性的大小则与植物抵抗低温胁迫能力密切相关。丙二醛 (MDA)是膜脂过氧化产物,MDA 的积累能对膜和细胞造成进一步伤害,其含 量可以反映逆境下细胞膜的稳定性。MDA 含量越高,其受低温胁迫的危害就越 大[22]。本实验结果显示,经过 SA 预处理的藜豆幼苗叶片中的 MDA 含量并未显 著降低,说明外源水杨酸对 MDA 的合成没有明显的抑制作用。 植物受低温伤害时首先是质膜结构受到破坏,细胞膜的透性增大, 引起电解 质的外渗,对植物造成伤害[23]。膜透性的增大是低温伤害的重要标志[24],维持膜 的稳定是减少植物受伤害的一个至关重要的环节。本研究结果显示 SA 预处理对 藜豆幼苗叶片细胞膜透性没有多大的改善,对细胞膜稳定性的影响也不大。 总之,本次实验只是对外源水杨酸能够提高藜豆幼苗的抗冷性进行了初探, 其抗冷性机理的研究还有待进一步探讨。

7

参考文献
[1] 张德纯.蔬菜史话·藜豆[J].中国蔬菜.2009,(19):36-36. [2] 鲁旭东,陈小飞.水杨酸在植物抗逆性中的作用[J].孝感学院学报.2006,26(3):13-17. [3] Raskin I. Role of salicylic acid in plants[J]. Ann Rev Plant Physiol Plant Mol Biol.1992,43: 439-463. [4] 李德红等.水杨酸在植物体内的作用[J].植物生理学通讯.1995,31(2): 144-149. [5] Shakirova F M, et al. Changes in the hormonal status of wheat seedlings induced by salicylic acid and salinity[J]. Plant Sci. 2003,164: 317-322. [6] 李宁毅,苏胜举.外源水杨酸在园艺植物上的应用及生理效应[J].北方园艺.2010(16):2 14-216. [7] 黄爱霞等.水杨酸对黄瓜幼苗抗冷性的影响[J].陕西师范大学学报(自然科学版). 2003,31(3): 107-109. [8] 吕军芬等.水杨酸对西瓜抗冷性生理指标的影响[J].甘肃农业大学学报.2004,39(1): 62-65. [9] Janda T, et al. Hydroponic treatment with salicylic acid decreases the effects of chilling injury in maize (Zea mays L.) plants[J].Planta.1999,208: 175-180. [10] 李 艳 军 等 . 外 源 水 杨 酸 诱 导 对 番 茄 幼 苗 抗 冷 性 的 影 响 [J]. 东 北 农 业 大 学 学 报 . 2006,37(4):463-467. [11] 段会军,李喜焕,吴立强等.低温胁迫下西瓜幼苗生理特性与冷害的关系[J].中国农学通 报.2007,23(1):84-87. [12] 王学奎.植物生理生化实验原理和技术(第 2 版)[M].北京:高等教育出版社,2007,7. [13] 王克安,王冰,顾三军等.低温对黄瓜生理生化、代谢功能及形态的影响[J].山东农业科 学.1998(4):52-55. [14] 乔 永 旭 . 低 温 处理 过 程 中水 杨 酸 对 红 掌叶 片 生 理指 标 的 影 响 [J]. 东 北 林业大 学 学 报.2010,38(2):11-15. [15] 陈杰中,徐春香.植物冷害极其抗冷生理[J].福建果树.1998(2):21-23. [16] 周 利 民, 陈惠 萍 .水 杨酸对 冷 胁迫 下香 蕉幼 苗抗冷 性 的效 应 [J].亚 热带 植物 科 学. 2009,38(1):19-22. [17] 王纪忠,周青.外源水杨酸对持续低温胁迫下黄瓜幼苗生长和细胞膜稳定性的影响[J]. 长江蔬菜(学术版).2010(16):29-3. [18] 张琳,王甲辰,左强等.低温胁迫下喷施水杨酸对西红柿幼苗抗寒性的影响[J].现代农业
8

科技.2010(10):96-97,100. [19] 陈奕吟等.低温锻炼对胡杨愈伤组织抗寒性、可溶性蛋白、脯氨酸含量及抗氧化酶活性 的影响[J].山东农业科学.2007(3): 46-49. [20] Borman H C, et al. Nicotianana tabacum callus studies X.ABA in crease resistance to cold damage[J].Physiol Plant.1982,48: 491-493. [21] L YON S J M.Chilling injury in plants[J]. Physiol Plant.1973(24): 445-446. [22] 段会军,李喜焕,吴立强等.低温胁迫下西瓜幼苗生理特性与冷害的关系[J].中国农学通 报.2007(23):84-87. [23] 余叔文, 汤章城.植物生理与分子生物学[M].北京:科学出版社,1998: 727-728. [24] Corbineau F, et al. Decrease in sunflower seed viability caused by high temperatures as related to energy metabolism membrane damage and lipid composition[J].Physiol Plant. 2002,16: 489-496.

9

致 谢
在毕业实习和毕业论文的撰写过程中得到张凤银老师的悉心指导, 让我受益 匪浅,本人在此表示忠心的感谢。 同时,也感谢杨守伟、黄航、陈元元、叶秀娟、金杰、孙彩云、程龙等同学 在我实验实施过程中给予热情的帮助。

10


相关文章:
外源SA对持续低温胁迫藜豆幼苗的生长及生理特性的影响
外源SA对持续低温胁迫藜豆幼苗的生长及生理特性的 影响学生:×××,江汉大学生命科学学院 指导老师:×××,江汉大学生命科学学院 摘要 [目的]探讨外源 SA 在低温...
持续低温对玉米幼苗生理指标的影响
持续低温对玉米幼苗生理指标的影响 持续低温对玉米幼苗生理指标的影响陈宇杰 A...不利于植物生存和生长的环境条件统称为逆境或环境胁迫,包括冷、 热、 旱、 涝...
高级植物生理实验 -低温胁迫对小麦生理生化特性的影响
高级植物生理实验 -低温胁迫对小麦生理生化特性的影响...差,2天后表现 出抗寒性减弱,表明该期不耐持续低温...在低温胁迫期间, 低温胁迫处理的小麦幼苗的的 GSH ...
不同低温处理对黄瓜幼苗的影响
摘要: 研究选用津研四号和超美特作为试验材料, 开展了低温处理对黄瓜幼苗生长生理特性 的影响研究,对比两个品种在不同程度低温胁迫的生长指标变化,以期为黄瓜冬...
浅谈低温胁迫对植物的影响
低温胁迫的植物植株矮小,主要体现在根茎 叶花等方面的差异,对于幼苗则降低其存活率,促进植物早花,增加 花朵数量,影响结实,从而影响繁殖能力。温度对叶片的生长有...
低温胁迫对大叶女贞膜脂过氧化及保护酶活性
低温胁迫对西葫芦嫁接光合特性的影响 [J];上海...低温胁迫外源水杨酸对油菜叶片生理活性的影响 [J]...低温胁迫的蛋白质组研究[A];2006 中国植物细胞发育...
不同时间的低温胁迫对黄瓜幼苗抗冷性的影响
【摘要】 试验采用 6℃低温对抗冷性不同的两个黄瓜品种在一叶一心期进行 1d、3d、6d 的处理,以研究不同时间的低温胁迫对黄瓜幼苗抗冷性的影响。以常温作对照,...
低温胁迫对玉米幼苗生理指标的影响
低温胁迫对玉米幼苗生理指标的影响摘要:本实验把玉米幼苗培养完成后,分别在 4℃和常温(其它条件相同)处理 24h,并测定 在两种不同温度下玉米各种生理指标(叶绿素含量...
低温胁迫对玉米幼苗抗冷性的影响
低温胁迫对玉米幼苗抗冷性的影响彭瞰看 ( 东北农业大学生命科学学院黑龙江哈尔滨 150030) 摘要: 植物逆境生理是研究植物在逆境条件下的生理生化变化及其 机制,逆境也...
低温胁迫对玉米幼苗的影响初探
低温胁迫对玉米幼苗的影响初探摘 要:本文以松玉 656、良玉 188 为材料,以 20℃为对照组,将玉米幼苗进行 24 小时 5℃ 低温胁迫处理。测定沙培养玉米幼苗 5 项...
更多相关标签:
低温胁迫 | 低温胁迫对植物的影响 | 植物低温胁迫实验 | 藜豆提取物 | 刺毛藜豆 | 藜豆中毒救治 | 外源性抑郁症 | 外源性忧郁症 |